Réactif solution de coloration P.A.S.M.

pour histologiepour la cytologie

Nombre minimal de tests exécutables 100 Temps de réalisation 1 heure 15 minutes Validité du produit 1 an Conditions de stockage 2-8°C Équipement complémentaire Étuve Application Méthode utilisée pour la visualisation d’éléments argyrophiles et mucopolysaccharidiques (membranes basales, champignons, bactéries, etc.) sur des coupes de tissu. Il s’agit de la méthode préférentielle pour l’étude de la membrane basale en biopsie rénale. Résultat Membranes basales, glycogène, capsule des champignons et des bactéries noir Comme pour toutes les réactions à base de sels d’argent, un nettoyage en profondeur de la verrerie et l’utilisation d’eau distillée ou déionisée de bonne qualité sont recommandés. Il est également recommandé de ne pas mettre les instruments métalliques (pinces, etc.) en contact avec des réactifs contenant des sels d’argent. MÉTHODE 1) Amener la coupe à l'eau distillée. 2) Verser 10 gouttes de réactif A sur la coupe : laisser agir 30 minutes. 3) Laver dans de l'eau distillée. 4) Préparer la chambre humide et y placer la lame avec la coupe tournée vers le haut. Verser dans la petite capsule attachée à l'emballage 10 gouttes de réactif B, ajouter 10 gouttes de réactif C et 10 gouttes de réactif D, agiter et verser la solution ainsi obtenue sur la coupe : fermer la chambre humide et incuber dans une étuve à 60°C. Laisser agir 30-40 minutes 5) Retirer la chambre humide de l’étuve, ouvrir le couvercle et vérifier le ton de l'imprégnation : si le noircissement est correct, laisser refroidir la lame pendant 5 minutes et la laver dans de l'eau distillée, si elle est insuffisante, incuber à nouveau dans l’étuve et vérifier toutes les 5 minutes